LH DETECT® se destine aux travaux suivants : La détection de la LH peut se faire aussi bien à partir du sang total, du plasma, du sérum ou du lait dans le cas des ovins. Choisissez votre substrat: l'ABTS ou le TMB (recommandé pour des travaux quantitatifs), ainsi que le type de plaque: entière ou sécable (par barrettes de 16 puits). LH DETECT® fait l'objet d'une license INRA, exclusive et mondiale. LH DETECT® est un dosage immunoenzymatique de type ELISA sandwich. L'activité enzymatique est révélée à l'aide d'un substrat chromogène. L'intensité de la réaction est proportionnelle à la concentration de LH contenue dans l'échantillon. L'évaluation peut être effectuée à l'œil (étude qualitative) ou mesurée à l’aide d’un spectrophotomètre. Pour un dosage qualitatif, un échantillon de contrôle positif permet la validation de la réaction. Pour un dosage quantitatif, une gamme étalon, réalisée avec la LH de l'espèce concernée, est utilisée comme référence. Vous trouverez ci-dessous le mode opératoire de LH DETECT®. Il décrit en images la préparation des réactifs et des échantillons ainsi que le protocole expérimental à suivre. Des informations plus détaillées accompagnent tout envoi de produits commandés sur notre site. Pour toute question relative à l'utilisation de LH DETECT®, vous pouvez contacter nos équipes techniques à partir de la rubrique 'Contact'. Téléchargez le mode opératoire L'intervalle de temps " pic de LH - ovulation " est constant et estimé à 24h ± 2h chez la brebis (Cumming IA et al., 1973; Biol Reprod. 9, 24-29). A l'inverse l'intervalle "début d'œstrus - ovulation" est très variable et n'apporte pas cette précision. Chez les femelles en lactation, LH DETECT® permet également de doser la LH dans le lait. La durée du pic pré ovulatoire de LH est plus longue dans le lait que dans le sang, ce qui permet avantageusement d'espacer les prélèvements. Évidemment, les concentrations en LH sont plus faibles. Voici quelques exemples d'utilisation de LH DETECT® chez les ovins : Le coefficient de corrélation obtenu avec un dosage RIA de référence (Pelletier J. et al, 1982; J. Reprod. Fertil.,64, 341-346) est de 0.98. LH-DETECT® dans Biology of Reproduction, 1999 / 61, 209 - 218 ROY F, COMBES B, VAIMAN D, CRIBIU EP, POBEL T, DELETANG F, COMBARNOUS Y, GUILLOU F, MAUREL MC 1999 Humoral Immune Response to Equine Chorionic Gonadotropin in Ewes: Association with Major Histocompatibility Complex and Interference with Subsequent Fertility. Biology of Reproduction 61:209-218 LH-DETECT® dans Animal Reproduction Science, 2009 BEN SALEM I, REKIK M, GONZALES-BULNES A, LASSOUED N, KRAIEM K 2009 Differences in preovulatory follicle dynamics and timing of preovulatory LH surge affect fertility of maiden sheeps reared in semi-arid extensive conditions. Animal Reproduction Science 117(1-2):60-66 LH-DETECT® dans Toxicological Sciences, 2010 / 117 (1): 54-62 LH-DETECT® dans Theriogenology, 2009 / 71(6) : 1018 - 1025 LH-DETECT® dans Animal Products from the Mediterranean Area, 2006 / 119: 343-347 LH-DETECT® dans Journal of Animal Reproduction Science, 2009 / 114 (4), 384-392 LH-DETECT® dans Theriogenology, 2006 / 65 (7) 1265–1278
Les prélèvements de sang sont effectués toutes les 20 minutes pendant plusieurs heures. Il est conseillé de regrouper les prélèvements pour chaque animal afin de pouvoir les doser sur une même plaque.
Les prélèvements sanguins peuvent être réalisés toutes les 4h, de 24h après la fin du traitement progestagène - eCG jusqu'à 55h (moment de l'IA systématique)
Les prélèvements de lait sont à réaliser toutes les 8 à 12h soit au moment des traites du matin et du soir, pendant la même durée que les prélèvements sanguins (24h à 55h après retrait de l'éponge)
SEVERINE H COLLET, NICOLE PICARD-HAGEN, CATHERINE VIGUIÉ, MARLENE Z LACROIX, PIERRE-LOUIS TOUTAIN et VERONIQUE GAYRARD 2010 Estrogenicity of Bisphenol A: A Concentration-Effect Relationship on Luteinizing Hormone Secretion in a Sensitive Model of Prepubertal Lamb. Toxicol. Sci. (2010) 117 (1): 54-62
I CONTRERAS SOLIS, B VASQUEZ, T DIAZ, C LETELIER, A LOPEZ-SEBASTIEN et A GONZALES-BULNES 2009 Efficiency of estrous synchronization in tropical sheep by combining short-interval cloprostenol-based protocols and "male effect". Theriogenology 71 (6): 1018 - 1025
M.I. VASQUES, S. CAVACO-GONÇALVES, C.C. MARQUES, J.P. BARBAS, M.C. BAPTISTA, T.P. CUNHA & A.E.M. HORTA 2006 The effect of ram exposure previous to progestagen oestrus synchronization on corpus luteum function and fertility in crossbred ewes. Animal Products from the Mediterranean Area, 2006 / 119: 343-347
IGNACIO CONTRERAS-SOLIS, B. VASQUEZ, T. DIAZ, C. LETELIER, A. LOPEZ-SEBASTIAN, A. GONZALEZ-BULNES 2009 Ovarian and endocrine responses in tropical sheep treated with reduced doses of cloprostenol. Journal of Animal Reproduction Science (2009) 114 (4): 384-392
R. BONI, R. SANTILLO, G. MACCHIA, P. SPINELLI, G. FERRANDINO, A. D'ANIELLO 2006 d-Aspartate and reproductive activity in sheep. Theriogenology, 2006 / 65 (7) 1265-1278